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DU-145細胞増殖阻害 10μM 阻害率(%) Glabridin-2010-1,Hirsutine-2010-1,Honokiol-2010-1,Magnolol-2010-1,Osthole-2010-1,Saikosaponin A-2010-1,[6]-Shogaol-2010-1,Wogonin-2010-1,Bufalin-2010-1,Curcumin-2010-1,(-)-Epi

4962. [活性] 試験項目説明『OHラジカル生成阻害』

OHラジカル生成阻害コントロール比その他Ｘ線100Gy照射時に生成するOHラジカル(DMPO-OH)量を100％として，試験薬物のOHラジカル生成阻害を表示した。免疫系・アレルギー Cell-free ①DMPO（10mM）をスピン捕捉剤として試験薬物を添加（全体容量0.5ml）。②Ｘ線100Gy照射。③生成するOHラジカル量を測定した。活性試験項目説明

4963. [活性] 試験項目説明『温度感受性チャネルmouse／human TRPM2に対する活性化作用』

温度感受性チャネルmouse／human TRPM2に対する活性化作用コントロール比 mouse/human mouse/human TRPM2のIonomycine 5µMによる値に対する比率で表した。その他 Cell-based ①HEK293T細胞に試験薬物を添加。②Calcium Kit II - Fluo 4 NW type (Dojin)を用い，強制発現させたmouse/human

4964. [活性] 試験項目説明『温度感受性チャネルmouse TRPM8に対する活性化作用』

温度感受性チャネルmouse TRPM8に対する活性化作用コントロール比 mouse mouse TRPM8のmenthol500µMによる値に対する比率で表した。その他 Cell-based ①HEK293T細胞に試験薬物を添加。②Calcium Kit II - Fluo 4 NW type (Dojin)を用い，強制発現させたmouse TRPM8チャネルについて，細胞内蛍光強度の増加量

4965. [活性] 試験項目説明『Aβ(25-35)誘発萎縮樹状突起伸展作用』

Aβ(25-35)誘発萎縮樹状突起伸展作用伸展率(%) ラットコントロールの樹状突起の長さを100%，Ab(25-35)処置による長さを0%とし，試験薬物による変化を%で示した。（正数値が大きいほど突起が伸展する）脳・神経系 Cell-based ①SDラット胎生18日齢胎児脳より大脳皮質を摘出し分散培養。②培養2日後にAb(25-35)(10 uM)を処置。③2日後に試験薬物を処置。④4日

4966. [活性] 試験項目説明『DPP4阻害作用』

DPP4阻害作用コントロール比その他コントロール(水)のDPP4活性を100%とし，コントロールに対する増減率をDPP4阻害率(%)とした。内分泌・代謝系 Cell-free 1) 試験物質溶液10μlと測定緩衝液25μl，DPP4溶液を96wellプレート上で混和。 2) 37℃で10分間静置後にH‐Gly‐Pro‐AMC溶液50μlを加えて混合し、37℃に加温。 3) 蛍光強度を測

4967. [活性] 個々の活性試験結果『IL-6産生阻害活性 0.01μM』

IL-6産生阻害活性 0.01μM 阻害率(%) Bufalin-2010-1,Cinobufagin-2010-1 Bufalin,Cinobufagin ヒト個々の活性試験結果化合物

4968. [活性] 個々の活性試験結果『IL-6産生阻害活性 0.1μM』

IL-6産生阻害活性 0.1μM 阻害率(%) Cinobufotalin-2010-1 Cinobufotalin ヒト個々の活性試験結果化合物

4969. [活性] 試験項目説明『温度感受性チャネルhuman TRPA1に対する活性化作用』

温度感受性チャネルhuman TRPA1に対する活性化作用コントロール比 human human TRPA1のAITC300µMによる値に対する比率で表した。その他 Cell-based ①HEK293T細胞に試験薬物を添加。②Calcium Kit II - Fluo 4 NW type (Dojin)を用い，強制発現させたhuman TRPA1チャネルについて，細胞内蛍光強度の増加量（サン

4970. [活性] 個々の活性試験結果『IL-6産生阻害活性 0.03μM』

IL-6産生阻害活性 0.03μM 阻害率(%) Bufotalin-2010-1 Bufotalin ヒト個々の活性試験結果化合物

4971. [活性] 試験項目説明『アミラーゼの酵素活性に対する阻害作用』

アミラーゼの酵素活性に対する阻害作用コントロール比 (%) その他コントロール条件 (ミリQ処置水) に対する、アミラーゼの酵素活性の比率 (%) を示す。100より小さい値は酵素活性が阻害されたことを示唆する。消化器系 Cell-free 1) 分光光度計のレファレンス側にMES buffer 1000 μlを加えたセルをセットし自動ゼロ点補正をした。2) セルにMES buffer、α-

4972. [活性] 個々の活性試験結果『IL-6産生阻害活性 1μM』

IL-6産生阻害活性 1μM 阻害率(%) Alkannin-2010-1,Shikonin-2010-1 Alkannin,Shikonin ヒト個々の活性試験結果化合物

4973. [活性] 試験項目説明『セリンカルボキシルプロテアーゼの酵素活性に対する阻害作用』

セリンカルボキシルプロテアーゼの酵素活性に対する阻害作用阻害率(%) その他コントロール条件 (試験薬物添加なし) に対する、セリンカルボキシルプロテアーゼの酵素活性の減少率 (%) を示す。値が大きいほど強い阻害作用があったことを示唆する。脳・神経系 Cell-free 1) 15 μLの酵素 (kumamolisin、1.2 μg/ml in 50 mM 酢酸バッファー、pH 3.4)

4974. [活性] 試験項目説明『細胞内snRNP量変動作用』

細胞内snRNP量変動作用コントロール比 (%) ヒトコントロール条件 (DMSOまたは純水) に対する、snRNP量の比率 (%) を示す。100より小さい値は細胞内のsnRNP量が減少したことを示唆する。その他 Cell-based 1) snRNPレポ−ターを安定発現させた293T細胞を96穴プレートに播種し、培地中に所定濃度の試験薬物溶液を添加した。培地液量は200 μLとした。2)

4975. [活性] 試験項目説明『NO産生に対する阻害作用』

NO産生に対する阻害作用コントロール比 (%) マウスコントロール条件 (試験薬物添加なし) に対する、NO産生量の比率 (%) を示す。100より小さい値はNO産生が阻害されたことを示唆する。脳・神経系 Cell-based 1) BV-2細胞を96穴のグリース試験用マイクロプレートに7.5×10^4 cells/wellで播種し、試験薬物を添加して30 min静置した。2) LPS (0

4976. [活性] 個々の活性試験結果『IL-6産生阻害活性 10μM』

IL-6産生阻害活性 10μM 阻害率(%) [6]-Shogaol-2010-1,Wogonin-2010-1,Curcumin-2010-1,Alisol B-2010-1 Shogaol,Wogonin,Curcumin,Alisol B ヒト個々の活性試験結果化合物

4977. [活性] 試験項目説明『溶連菌毒素NADaseの酵素活性に対する阻害作用』

溶連菌毒素NADaseの酵素活性に対する阻害作用阻害率(%) その他コントロール条件 (水) に対する、溶連菌毒素NADaseの酵素活性の減少率 (%) を示す。(DB管理者注記: NADaseによって分解されずに残っている基質の量を測定し、その値がコントロールと比べて減ったのならば、正の値はNADaseの酵素活性に対する促進作用を表している可能性がある。）感染症 Cell-free 1)

4978. [活性] 試験項目説明『AhRに対するアゴニスト活性』

AhRに対するアゴニスト活性コントロール比その他コントロール条件 (水またはDMSO) に対する、AhRの活性化度合いの比率を示す。1より大きい値は試験薬物により受容体が活性化されたことを示唆する。内分泌・代謝系 Cell-based 1) ヒト肝癌由来HepG2細胞にXREを有するルシフェラーゼレポータープラスミドとβガラクトシダーゼを恒常的に発現するプラスミドをリン酸カルシウム法にて導

4979. [活性] 試験項目説明『PANC-1細胞に対する細胞毒性』

PANC-1細胞に対する細胞毒性コントロール比ヒトコントロール条件 (オートクレーブ滅菌水またはDMSO) に対する、生細胞数の比率 (%) を示す。100より小さい値は細胞障害作用を表す。がん Cell-based 1) 生薬抽出エキスは0.22 μmのフィルターでろ過して滅菌した。生薬由来化合物 (10 mM, 2 mL) はphosphate-buffered saline (PBS

4980. [活性] 試験項目説明『BDNF遺伝子の発現に対する促進作用』

BDNF遺伝子の発現に対する促進作用コントロール比 (%) マウスコントロール条件 (Milli-Q処置水) に対する、BDNF遺伝子発現量の比率 (%) を示す。100より大きい値はBDNF遺伝子発現量の増加を示唆する。脳・神経系 Cell-based 1) BDNF-Lucマウス (E16.5) より大脳皮質細胞を抽出し、96ウェルプレートを用いて13日間培養した。培養にはNeuroba

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